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重组血管紧张素转化酶抑制肽工程菌细胞破碎条件优化

时间:2014-08-22 09:43 文章来源:http://www.lunwenbuluo.com 作者:李艳孙海燕周丽珍刘冬 点击次数:

摘要:以重组血管紧张素转化酶抑制肽(ACEIP)工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎率、破碎液中目的融合蛋白浓度(GST-AHP)为主要考察指标,对重组血管紧张素抑制肽工程菌破碎条件进行了优化。结果表明,其最佳工艺条件为每克湿菌体重悬于3mL含有2mmol/LEDTA的1×PBS缓冲液中,加溶菌酶至终浓度20000U/mL,室温放置30min后超声破碎30min,4℃10000r/min离心10min取上清液。在此最佳工艺条件下破碎液中可溶性GST-AHP浓度达到1.83g/L。
 
  关键词:重组血管紧张素转化酶抑制肽(ACEIP);工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP);破碎条件
 
  血管紧张素转化酶抑制肽(ACEIP)是一类通过抑制血管紧张素转化酶活性从而达到降低血压的小分子多肽,具有降压效果明显、无毒副作用等特点[1-4]。ACEIP可通过特异性酶解从天然动植物和微生物蛋白中提取,但由于天然蛋白中ACEIP含量很低,因而产率低、成本高,难以产业化。化学合成方法可以按照人们的意愿合成制备任意活性的ACEIP,但大都因成本高、副反应物多及化合物残留等问题制约其产业化发展。近年来利用微生物基因工程技术生产蛋白质多肽药物和食品原料由于具有表达高效、产量高、成本低等优点而越来越得到广泛应用。
 
  本研究通过分析ACEIP结构与降血压活性之间的关系,设计出高活性的ACEIP单体,并利用基因工程手段克隆到大肠杆菌融合表达载体pGEX-4T-2之上,构建了能高效稳定表达ACEIP的基因工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP)[5]。由于该工程菌表达的ACEIP属胞内表达,因而如何通过经济高效的细胞破碎工艺将胞内表达的ACEIP溶出成为ACEIP分离纯化的关键步骤之一[6]。因此,本研究以细胞破碎率、破碎液中目的融合蛋白浓度为主要考察指标,对构建的基因工程菌的细胞破碎条件进行了优化。研究结果将为后续的进一步分离纯化奠定基础。
 
  1材料与方法
 
  1.1材料与仪器
 
  基因工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP)自制;二硫苏糖醇(DTT),加拿大BBI分装,超纯;三羟甲基氨基甲烷(Tris)、甘氨酸、TritonX-100、溶菌酶(lysozyme,20000U/mg),加拿大BBI公司产品;丙烯酰胺、亚甲双丙烯酰胺、N,N,N,N,-四甲基乙烯二胺(TEMED)、过硫酸胺(APS)、β-ME(β-巯基乙醇),美国Amresco公司产品;十二烷基磺酸钠(SDS)、考马斯亮蓝R-250,Fluka产品;ProteinMolecularWeightMarker(M.W.14.4~116.0kDa),购自Fermentas公司;BCA蛋白检测试剂盒,购自Pierce公司。
 
  BiostatC型30L发酵罐,德国贝朗公司;垂直电泳槽、CONSORTE861型电泳仪,美国UVP公司;GeneGenius凝胶成像系统,Syngene公司;超声波破碎仪(VC×600型),Sonics公司;核酸蛋白检测仪,德国Eppendorf公司。
 
  1.2试验方法
 
  1.2.1发酵液的制备活化基因工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP),通过菌种扩增,再进行高密度发酵。具体操作如下:活化后的基因工程菌按1%接种量转接至100mL含氨苄青霉素(Amp)的2×YTA培养基,37℃、250r/min培养8h。再按10%接种量转接至含20L发酵培养基的30L发酵罐中,控制溶氧40%,pH7.0,37℃进行发酵。培养2h后开始补料,补料速度1mL/min,补料1h,培养3h后加入诱导剂诱导6h,共发酵9h制得发酵液。
 
  1.2.2目的蛋白含量的测定采用SDS-PAGE蛋白电泳法,用凝胶成像系统照相保存,用GeneTool软件分析目的融合蛋白(GST-AHP)含量。
 
  1.2.3总蛋白含量的测定采用BCA法。碱性条件下,蛋白质将Cu2+还原为Cu+,Cu+与BCA试剂形成紫颜色的络合物,测定其在562nm处的吸光度,并与标准曲线对比,即可计算出待测蛋白的浓度。具体操作如下:将标准蛋白牛血清白蛋白(BSA)用1×PBS稀释成浓度分别为25、125、250、500、1000、1500、2000μg/mL的标准品溶液,取100μL不同浓度的标准品溶液加入1mL工作液,37℃反应30min,测定OD562nm。以蛋白质浓度(μg/mL)为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
 
  1.2.4GST-AHP浓度的确定根据“1.2.3”所得总蛋白含量及“1.2.2”所得GST-AHP含量计算GST-AHP浓度。
 
  1.2.5酶法与反复冻融法相结合破碎菌体发酵液4000r/min离心15min,弃上清液收集菌体沉淀,用1×PBS缓冲液洗涤2次,称重记录湿菌体的质量。按每克湿菌体加3mL含有2mmol/LEDTA的1×PBS的比例将菌体沉淀重悬,加溶菌酶至终浓度20000U/mL,冰浴30min后,-70℃冷冻、25℃水浴消融,反复冻融8次。每冻融1次,镜检计算破碎率;同时取1mL细胞裂解液,用针筒将20%TritonX-100强行注入黏的细胞裂解液中至终浓度为1%,温和混合30min后,加入DNase和RNase至终浓度为5μg/mL,4℃振荡10min。10000r/min离心10min收集上清液,取10μL上清液进行SDS-PAGE电泳,用GeneTool分析,比较不同冻融次数对GST-AHP浓度的影响。
 
  1.2.6酶法与超声波法相结合破碎菌体按每克湿菌体加3mL含有2mmol/LEDTA的1×PBS的比例将菌体沉淀重悬,加溶菌酶至终浓度20000U/mL,室温放置30min。取200mL酶解液超声波破碎,每破碎5min取样1次,镜检计算破碎率;同时取样1mL,离心收集上清液取10μL上样进行SDS-PAGE电泳检测,用GeneTool分析,比较不同超声时间对GST-AHP浓度的影响。超声波处理参数:Ф13mm螺纹探头和Ф13mm螺纹探头可换尖端,振幅75%,开5s,停5s。共破碎40min。
 
  2结果与分析
 
  2.1标准曲线的绘制
 
  标准曲线见图1。以蛋白质浓度(μg/mL)为横坐标,以吸光度为纵坐标,得回归方程:y=0.0013x+0.0459,R2=0.997。
 
  2.2酶法与反复冻融法相结合的破碎条件研究结果
 
  2.2.1冻融次数对菌体破碎率的影响结果见图2。由图2可见,随着冻融次数的增多,菌体破碎率增加,当反复冻融5次时,破碎率已达90%,6次时即达100%。
 
  2.2.2冻融次数对GST-AHP浓度的影响结果见图3和图4。由图3和图4可见,反复冻融6次时,上清液中GST-AHP浓度已达到最大。因此反复冻融的次数确定为6次。此时,上清液中GST-AHP浓度达1.86g/L。
 
  2.3酶法和超声波法相结合的破碎条件研究结果
 
  2.3.1超声时间对菌体破碎率的影响结果见图5。由图5可见,随着超声时间的延长,菌体破碎率增加,当超声时间达到30min时,菌体破碎率达到100%。
 
  2.3.2超声时间对GST-AHP浓度的影响结果见图6和图7。由图6和图7可见,超声时间达30min时,上清液中GST-AHP浓度达到最大(1.83g/L),超声时间进一步延长,GST-AHP浓度不再增加。因此确定超声破碎时间以30min为宜。
 
  2.4两种方法的破碎效果比较
 
  反复冻融6次或超声波破碎30min,细胞破碎率均可达到100%,此时,上清液中GST-AHP浓度达到最大,分别为1.86和1.83g/L。反复冻融法操作较繁琐,耗时长,需要添加价格昂贵的DNase和RNase降解DNA及RNA以降低破碎液黏度,且每次处理量不能太大;而超声波破碎时间短、效率高,且对细胞破碎所释放的DNA、RNA具有一定剪切作用,破碎同时能有效降低其黏度,综合考虑选择超声波破碎为工程菌细胞破碎条件。
 
  3结论
 
  试验结果表明,重组血管紧张素转化酶抑制肽工程菌E.coliBL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎的最优工艺条件为:每克湿菌体重悬于3mL含有2mmol/LEDTA的1×PBS缓冲液中,加溶菌酶至终浓度为20000U/mL,室温放置30min后超声波破碎30min,4℃10000r/min离心10min取上清液。超声波破碎条件:Sonics(VC×600型)超声波破碎仪,Ф13mm螺纹探头和Ф13mm螺纹探头可换尖端,振幅75%,开5s,停5s。此条件下上清液中可溶性GST-AHP浓度达到1.83g/L。
 
  参考文献:
 
  [1]YAMAMOTON,EJIRIM,MIZUNOS.Biogenicpeptidesandtheirpotentialuse[J].CurrPharmDes,2003,9(16):1345-1355.
 
  [2]李世敏,刘冬,孙海燕,等.玉米活性多肽降血压作用及其机制的研究[J].营养学报,2007,29(2):186-188.
 
  [3]FUJITAH,YOKOYAMAK,YOSHIKAWAM.ClassificationandantihypertensiveactivityofangiotensinI-convertingenzymeinhibitorypeptidesderivedfromfoodproteins[J].JFoodSci,2000,65(4):564-569.
 
  [4]FITZGERALDRJ,MEISELH.Milkprotein-derivedpeptideinhibitorsofangiotensin-I-convertingenzyme[J].BrJNutr,2000,84(Suppl1):S33-S37.
 
  [5]LIUD,SUNHY,ZHANGLJ,etal.High-levelexpressionofmilk-derivedantihypertensivepeptideinEscherichiacolianditsbioactivity[J].JAgricFoodChem,2007,55:5109-5112.
 
  [6]刘冬,吴亚丽,张丽君,等.重组降血压肽基因工程菌破碎方法研究[J].河南工业大学学报(自然科学版),2006,27(3):53-56.

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